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脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染的原理和步驟詳解
  • 發(fā)布日期:2021-12-03      瀏覽次數(shù):759
    • 1、細胞傳代

      1)棄掉培養(yǎng)皿中的培養(yǎng)基,用1ml的PBS溶液洗滌兩次。

      2)用移液槍加入1ml胰酶,消化1min(37℃,5% CO2)。用手輕拍培養(yǎng)瓶壁,觀察到細胞*從壁上脫落下來為止。

      3)加入1ml的含血清培養(yǎng)基終止反應(yīng)。

      4)用移液槍多次吹吸,使細胞*分散開。

      5)將培養(yǎng)液裝入離心管中,1000rpm離心5min。

      6)用培養(yǎng)液重懸細胞,細胞計數(shù)后選擇0.8 x 106個細胞加入一個35mm培養(yǎng)皿。

      7)將合適體積*培養(yǎng)液加入離心管中,混勻細胞后輕輕加入培養(yǎng)皿中,使其均勻分布。

      8)將培養(yǎng)皿轉(zhuǎn)入CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),第二天轉(zhuǎn)染。

      2、細胞轉(zhuǎn)染

      1)轉(zhuǎn)染試劑的準(zhǔn)備

      A、將400ul去核酸酶水加入管中,震蕩10s,溶解脂狀物。

      B、震蕩后將試劑放在-20℃保存,使用前還需震蕩。

      2)選擇合適的混合比例(1:1-1:2/脂質(zhì)體體積ul:DNA質(zhì)量ug)來轉(zhuǎn)染細胞。在一個轉(zhuǎn)染管中加入合適體積的無血清培養(yǎng)基。加入合適質(zhì)量的MyoD或者EGFP的DNA,震蕩后在加入合適體積的轉(zhuǎn)染試劑,再次震蕩。

      3)將混合液在室溫放置10-15min。

      4)吸去培養(yǎng)板中的培養(yǎng)基,用PBS或者無血清培養(yǎng)基清洗一次。

      5)加入混合液,將細胞放回培養(yǎng)箱中培養(yǎng)一個小時。

      6)到時間后,根據(jù)細胞種類決定是否移除混合液,之后加入*培養(yǎng)繼續(xù)培養(yǎng)24-48h。

      3、第二次細胞傳代

      1)在轉(zhuǎn)染后24h,觀察實驗結(jié)果并記錄綠色熒光蛋白表達情況。

      2)再次進行細胞傳代,按照免疫染色合適的密度0.8 x 105個細胞/35mm培養(yǎng)皿將細胞重新分入培養(yǎng)皿中。

      3)在正常條件下培養(yǎng)24h后,按照染色要求條件固定。


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